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细胞复苏是生物研究中常见的操作,其目的是恢复因低温保存而被抑制的细胞活性,确保细胞能够在实验中发挥其功能。复苏过程需遵循特定的原理和步骤,同时需注意一系列的事项以保证细胞的健康与活力。
实验原理的核心在于快速融化细胞冻存管中的冰晶,避免其缓慢融化导致水分渗入细胞而重新结晶,从而对细胞造成损害。快速融化能显著减少细胞受损的风险,保证复苏后的细胞具有较高的活性。
实验准备阶段需确保仪器和试剂的完备,包括水浴锅、台式离心机、细胞计数仪、CO2培养箱、倒置显微镜、移液、移液管移液器、以及细胞培养瓶等。同时,准备细胞培养基、双抗、FBS(胎牛血清)、PBS(磷酸盐缓冲液)和75%酒精等必需的试剂。
复苏步骤主要分为准备阶段和操作阶段。在准备阶段,水浴锅需预热至37℃,完全培养基(如F12-K培养基+10%FBS+1%双抗)需配制并预热至同样温度。操作阶段包括将培养基加入离心管,从液氮罐或-80℃冰箱中取出细胞冻存管迅速化冻,避免长时间融化导致细胞受损,以及在水浴中快速融化细胞冻存管,并进行一系列的转移和处理步骤,最终通过离心去除含有DMSO的冻存液,以准备细胞重新培养。
在复苏过程中,需注意以下几点事项:确保充分的实验准备、采取适当的防护措施、避免细胞冻存管在转移过程中爆炸、确保快速操作以减少细胞受损风险、在吸取细胞时保留头或移液管以避免污染、以及在复苏后对细胞进行培养的后续步骤。快速操作的目的在于减少DMSO对细胞的毒性影响,并避免水分重新进入细胞后形成冰晶,对细胞造成损害。
在实验过程中,操作者应严格遵循上述原理、步骤和注意事项,以确保细胞复苏的成功和细胞的健康。复苏后的细胞可用于后续的实验,为科研活动提供支持。然而,本内容旨在分享科研方法、资讯及传播知识,不构成任何投资建议、临床预防、诊断或治疗建议。在非商业性转载时,应注明出处。